ANOVA Institute for Regenerative Medicine - Offenbach, Deutschland:
Welche Krankheiten behandeln wir? Unser therapeutisches Angebot.

Die ANOVA IRM in Offenbach behandelt u.a. Arthrose und Arthritis, orthopädische Probleme wie Knieverletzungen, Sehnen- und Bänderrisse, Rückenverletzungen sowie andere chronische und entzündliche Erkrankungen. Nachfolgend finden Sie die Links zu den Übersichtsseiten der Krankheits-bezogenen Therapieangebote. Dort wird beschrieben wie eine Behandlung von z.B. Arthrose im Regelfall aussehen und ablaufen könnte.

Wenn sie sich genauer über die Stammzell-Therapien, also die angewendeten Stammzell-Therapeutika informieren wollen, finden sie diese unter Stammzelltherapien sowie den Unterkapiteln zu Knochenmarkstammzellen (BMC), Sekretom (Exosomen) und PRP (Plättchen-reiches Plasma).

Regenerative Medizin bei ANOVA IRM
Lernen Sie unser Behandlungsspektrum kennen:

Stammzellbasierte Behandlung von Osteoarthritis:  Behandle die Krankheit, nicht die Symptome

Osteoarthritis

Stammzelltherapie für Knieverletzungen und –degeneration

Knieverletzungen

Stammzellen gegen Rückenschmerzen und Verletzungen der Wirbelsäule

Rücken und Wirbelsäule

Kontraindikationen

Unsere Stammzellbehandlungen sind experimentell, aber wir behandeln nur solche Patienten, von denen wir auf Grundlage des Standes der Medizin, also der medizinisch-wissenschaftlichen Evidenz davon ausgehen, dass das Risiko/Nutzen-Verhältnis eine Behandlung indiziert.

Bitte haben sie Verständnis dafür, dass wir daher keine Patienten behandeln auf die folgende Punkte zutreffen:

  • Aktive Krebserkrankung in den letzten zwei Jahren
  • Noch nicht volljährig
  • Bestehende Schwangerschaft oder Stillzeit
  • Nicht in der Lage, selbständig zu atmen, bzw. Verwendung eines Beatmungsgeräts
  • Schwierigkeiten mit der Atmung in Rückenlage
  • Dysphagie (extreme Schluckbeschwerden)
  • Psychiatrische Erkrankung
  • Aktive Infektionskrankheit (Hepatitis A, B, C, HIV, Syphilis etc.)

Welche Behandlungen mit Stammzellen gibt es generell ?

Stammzellen sind die Bausteine ​​unseres Körpers und gelten allgemein als einer der wichtigsten Zelltypen des Körpers. Mesenchymale Stammzellen (MSCs) bieten ein enormes Potenzial für regenerative Therapien. Sie sind in der Lage, sich zu erneuern und in fast alle Zelltypen des Körpers zu differenzieren. Es gibt viele Möglichkeiten, MSCs aus dem menschlichen Körper zu isolieren.

Ein weitaus eleganterer und einfacherer Weg, MSCs zu gewinnen, ist aus Fettgewebe oder dem Knochenmark, d.h. Knochenmarkkonzentrat (BMC). Sowohl Fettgewebe als auch Knochenmark sind weit verbreitete Quellen für MSCs. Die Gewinnung von Stammzellen aus beiden Gewebearten erfolgt in einem Routineeingriff. Der wichtigste Vorteil ist, dass sie autologe (und damit personalisierte) Therapien leicht ermöglichen.

Welche Stammzellen für die medizinische Verwendung am besten geeignet und für die Behandlung von Patienten am effektivsten sind, hängt von vielen Aspekten ab. Dies hängt hauptsächlich vom spezifischen Gesundheitszustand des Patienten, der Verarbeitung des Gewebes (zur Isolierung der Stammzellen) und der Verabreichung des Medikaments ab. Neueste Studien haben gezeigt, dass aus Fettgewebe gewonnene MSCs in einigen Anwendungen biologische Vorteile hinsichtlich immunmodulatorischer Effekte und Proliferationskapazitäten bieten, während MSCs aus BMC in anderen Bereichen besser geeignet sind.

Die neueste Weiterentwicklung der auf Stammzellen basierenden Behandlungen ist das ANOVA Stammzellsekretom, auch Exosomentherapie genannt. Im Gegensatz zu früheren Hinweisen auf die Funktionsweise von Stammzellen haben neuere Forschungen gezeigt, dass die regenerative Wirkung von Stammzellen auf die löslichen Faktoren (Exosomen, Proteinen und Zytokinen) beruhen, die die Stammzellen absondern und zur Kommunikation mit der Umgebung verwenden. Diese Faktoren bilden zusammen das Sekretom, da sie durch Zellsekretion freigesetzt werden. Es wurde gezeigt, dass das Sekretom die Reparatur und Verjüngung beschädigter Gewebe in vielerlei Hinsicht stimulieren kann. Es konnte z.B. gezeigt werden, dass es die in den Organen ansässigen Stammzellen aktiviert, um beschädigte Zellen zu ersetzen, das Immunsystem zu modulieren, die Versorgung der Gewebe mit Sauerstoff und Nährstoffen zu verbessern, indem das Wachstum neuer Blutgefäße induziert wird - um nur einige Beispiele zu nennen.

ANOVA verwendet MSCs als "Fabrik" in einem sicheren Prozess, um diese Faktoren in hohen Konzentrationen und für Ihren individuellen Behandlungsplan zu produzieren.

ANOVA hat Spezialisten, die jeden Patienten sorgfältig untersuchen, um das bestmögliche individuelle Behandlungsprogramm zu entwickeln. Unsere Mission ist es, an der Spitze der regenerativen Medizin zu bleiben und unser Wissen anzuwenden, um die bestmöglichen Ergebnisse für Sie zu erzielen. Dafür führen unsere Ärzte für jeden Patienten eine Nutzen-Risko-Abwägung durch um sicherzustellen, dass die Therapie für den jeweiligen Patienten empfehlenswert ist.

ANOVA IRM - Sicherheit und Qualität

Die ANOVA IRM GmbH mit Sitz in Offenbach, bei Frankfurt am Main, Deutschland ist ein behördlich kontrolliertes, deutsches, medizinisches Unternehmen. Wir haben Erlaubnisse zur Gewinnung, Bearbeitung und Herstellung von Stammzellprodukten (ATMP und Gewebezubereitungen). Wir stellen alle unsere Stammzell-Produkte selbst her, kontrollieren sie nach Vorgaben aus GFP, GMP und dem europäischen Arzneibuch. Hierdurch ist bestmöglich sicher gestellt, dass Patienten nur sichere Produkte erhalten.

Derzeit bietet ANOVA hauptsächlich die BMC-Therapie an, die in Form einer Stammzellinjektion appliziert wird. Wir bieten auch Kombinationstherapien mit Plättchenreichem Plasma (PRP), einem Medium, das reich an Wachstumsfaktoren und anderen Zytokinen (Molekülen des Immunsystems) ist, die die Heilung stimulieren und Hyaluronsäure (HA, hyaluronic acid) an. Auch bietet die ANOVA in Einzelfällen das zellfreie Stammzellsekretom an, bei dem, wie der Name schon sagt, das Sekretom der Stammzellen appliziert wird. Grundsätzlich können diese Therapien miteinander kombiniert werden, da sie nahtlos zusammenwirken.

ANOVA bietet individualisierte und stets autologe Stammzelltherapien mit adulten Stammzellen (s.u.) an, die für den jeweiligen Zustand des Patienten und nur für den Patienten am besten geeignet sind. Die Anwendung dieser Therapien hängt vollständig vom Gesundheitszustand des Patienten ab.

Vorsicht vor ungeprüften und gefährlichen Stammzell-Angeboten

Wenn Sie die Angebote der ANOVA IRM mit denen anderer Hersteller vergleichen, lassen sie wichtige Punkte wie behördliche Kontrolle, Qualitätskontrolle, Art der Produkte und Applikationsart einfließen.

Eine Übersicht zu wichtigen Auswahlkriterien finden Sie nachfolgend.

Wie wähle ich eine Stammzelltherapie aus? Fragen an Ihre behandelnde Klinik

Sicherheit: Produkte können verunreinigt sein

  • Ist die Klinik oder Praxis behördlich kontrolliert? - Lassen sie sich das behördliche Zertifikat zur Genehmigung oder Erlaubnis zeigen.
  • Arbeitet die Klinik unter GFP oder GMP? - Diese Qualitätsmanagementsysteme stellen die Sicherheit und Qualität der Produkte sicher.
  • Welche Testungen zur Qualitätskontrolle erfolgen am Produkt vor der Anwendung und nach der Anwendung?
  • Erfolgen die Qualitätskontrollprüfungen nach europäischem Arzneibuch (Europa), nach 21 CFR (USA)?
  • Sind die Auftragslabore behördlich kontrolliert, wenn Prüfungen außer Haus erfolgen?

Allogene oder autologe Produkte: Allogene Produkte von Fremdspendern sind immer mit mehr Risiko verbunden, als autologe Stammzellen - Spender und Empfänger sind die gleiche Person

  • Wer sind die Fremdspender? In welchem Land werden die Fremdspenden gewonnen?
  • Wie erfolgt die Spenderkontrolle ? Wird jeder Spender einzeln getestet?
  • Worauf werden die Spender getestet? Standard ist HIV 1+2 (PCR), HBV und HCV (Antikörper und Antigen) und Treponema pallidum (Syphillis)

Dauer: Je kürzer der Ablauf, desto weniger Zeit bleibt für Qualitätskontrolle

  • Werden Sie als Spender vorab getestet ? Falls nicht, werden auch die anderen Spender nicht getestet, es kann zu Kreuzkontaminationen kommen.
  • Welche Qualitätskontrollen werden nach Entnahme, Be- und Verarbeitung gemacht?

Tierische Produkte: Illegal, gefährlich, unkontrolliert, risikobehaftet

Von diesen Produkten ist dringend abzuraten. Informieren Sie sich bei der Behörde (Regierungspräsidium, PEI, Arzneimittelbehörde) wenn Sie solche Produkte angeboten bekommen.

SVF: stromal vascular fraction - SVF - nicht risikominimiert - minderwertiges Produkt

Gegenüber BMC, PRP und Sekretom (Exosomen) ist dieses Produkt wegen seiner geringen Anzahl an Stammzellen, der manuellen (kontaminationsanfälligen) Herstellung und der Kürze der zur Verfügung stehenden Zeit bis zur Applikation nicht zu empfehlen. Wir bieten dieses Produkt nicht an.

Häufig gestellte Fragen zum Therapiespektrum - FAQ

Bezahlt die Krankenkasse meine Stammzell-Behandlung?

Nein, momentan bezahlen die Krankenkassen in Deutschland experimentelle Behandlungen generell nicht. Hierzu zählen Stammzellbehandlungen, aber auch intensive Parodontosebehandlungen, interventionelle radiologische Prostatakrebsbehandlungen (obwohl diese deutlich bessere Ergebnisse erzielen) sowie weitere neue Therapiearten.

Wie teuer ist eine Stammzellbehandlung?

Jede Behandlung ist individuell auf den Patienten abgestimmt und kann zwischen mehreren Hundert bis mehrere Zehntausend Euro kosten. Wir beraten Sie gerne und erstellen Ihnen dann gemäß Ihres Behandlungsplans einen Kostenvoranschlag. Eine internationale Übersicht finden Sie in unserem Blog-Post: Was kostet eine Stammzellbehandlung?

Behandeln Sie alle Patienten ?

Nein, wir behandeln nur solche Patienten, bei denen unsere Ärzte eine Indikation als gegeben ansehen. Dies bedeutet, dass sie davon ausgehen, dass der zu erwartende Therapieerfolg das Risiko des kleinen Eingriffs überwiegt. Diese Entscheidung treffen sie evidenz-basiert auf Grundlage der aktuellen Ergebnisse und dem Stand der medizinischen Wissenschaft und Technik.

Kontraindikationen - Wen behandeln wir nicht?

Bei verschiedenen Patientengruppen überwiegt für uns das Risiko oder es liegt nicht ausreichend wissenschaftliches Material vor, das eine Behandlung rechtfertigt. Bei Schwangeren und Kindern sehen wir das Risiko als zu groß und behandeln diese daher nicht. Personen mit mentalen Problemen behandeln wir nicht, weil hier in Frage gestellt ist, ob die Person die Aufklärung zu medizinischen Risiken der Eingriffe und Behandlung vollumfänglich verstehen können. Alle Patienten müssen außerdem selbstständig atmen können, da ansonsten das Anästhesierisiko zu hoch ist.

Bei Krebspatienten ist die wissenschaftliche Datenlage bisher unklar. Durch ihre regenerations-förderne Wirkung könnten Stammzellen bei Krebspatienten ein gesteigertes Tumorwachstum bewirken. Die Datenlage zeigt nun, dass in manchen biologischen Studien Stammzellen Krebswachstum fördern, in anderen wird das Tumorwachstum gehemmt. Aus diesem Grund behandeln wir derzeit nur Patienten, die mindestens 2 Jahre tumorfrei sind.

Welche Stammzell-Therapie ist zu empfehlen?
Arthrose-Arthritis-Rückenverletzungen-Bandscheibenschäden-MS-ALS-Parkinson-ED

Stammzelltherapien sind in der ANOVA immer auf den Patienten zugeschnitten und somit patientenindividuell. Nach einer intensiven Anamnese und Diagnostik empfehlen wir Ihnen eine Behandlungsart, die konventionell oder experimentell sein kann. Wir beraten Sie auch zu allen anderen Optionen, die Sie haben. Generell kann man jedoch folgendes Grundschema aufzeigen:

  • Arthrose: BMC und PRP
  • Arthritis: BMC und PRP
  • Polyarthritis: BMC und PRP an stark betroffenen Gelenken, Sekretom (Exosomen) fortlaufend zur Immunmodulation
  • Rückenverletzungen: BMC und PRP
  • Bandscheibenverletzungen: BMC und PRP
  • MS (multiple Sklerose): Sekretom (Exosomen) fortlaufend
  • ALS (amyothrophe Lateralsklerose): Sekretom (Exosomen) fortlaufend
  • Parkinson (PD): Sekretom (Exosomen) fortlaufend

Quellenangaben, Referenzen und Literatur zu Arthrose, Arthritis, BMC, PRP, Sekretom, Exsomen, EVs

  1. Jordan KM, Arden NK, Doherty M, et al. EULAR recommendations 2003: an evidence based approach to the management of knee osteoarthritis: report of a Task Force of the Standing Committee for International Clinical Studies Including Therapeutic Trials (ESCISIT). Ann Rheum Dis 2003;62:1145-55.
  2. Hameed F, Ihm J. Injectable medications for osteoarthritis. PM R 2012;4(5 Suppl):S75-81.
  3. Cheng OT, Souzdalnitski D, Vrooman B, Cheng J. Evidence-based knee injections for the management of arthritis. Pain Med 2012;13:740-53.
  4. Rutjes AW, Juni P, da Costa BR, Trelle S, Nuesch E, Reichenbach S. Viscosupplementation for osteoarthritis of the knee: a systematic review and meta-analysis. Ann Intern Med 2012;157:180-91.
  5. Bannuru RR, Natov NS, Obadan IE, Price LL, Schmid CH, McAlindon TE. Therapeutic trajectory of hyaluronic acid versus corticosteroids in the treatment of knee osteoarthritis: a systematic review and meta-analysis. Arthritis Rheum 2009;61:1704-11.
  6. R Chu CR, Williams AA, Coyle CH, et al. Early diagnosis to enable early treatment of pre-osteoarthritis. Arthritis Research & Therapy 2012;14:212-222 10 Hillary J. Braun and Garry E. Gold. Diagnosis of Osteoarthritis: Imaging. Bone. 2012 Aug; 51(2): 278–288.
  7. Usman Ahmed, Attia Anwar, Richard S. Savage, et al. Protein oxidation, nitration and glycation biomarkers for early-stage diagnosis of osteoarthritis of the knee and typing and progression of arthritic disease. Arthritis Research & Therapy, 2016; 18 (1) DOI: 10.1186/s13075-016-1154-3
  8. Hussain SM, Cicuttini FM, Giles GG, Graves SE, Wang Y. Relationship between circulating sex steroid hormone concentrations and incidence of total knee and hip arthroplasty due to osteoarthritis in men. Osteoarthritis and Cartilage. 2016 Aug 31;24(8):1408-12.
  9. Engdahl C, Börjesson AE, Forsman HF, Andersson A, Stubelius A, Krust A, Chambon P, Islander U, Ohlsson C, Carlsten H, Lagerquist MK. The role of total and cartilage-specific estrogen receptor alpha expression for the ameliorating effect of estrogen treatment on arthritis. Arthritis Res Ther. 2014 Jul 15;16(4):R150. doi: 10.1186/ar4612.
  10. Richmond RS, Carlson CS, Register TC, Shanker G, Loeser RF. Functional estrogen receptors in adult articular cartilage: estrogen replacement therapy increases chondrocyte synthesis of proteoglycans and insulin-like growth factor binding protein Arthritis & Rheumatism: Official Journal of the American College of Rheumatology. 2000 Sep;43(9):2081-90. 15 Liu Q, Wang X, Hua Y, Kong G, Wu X, Huang Z, Huang Z, Liu J, Yang Z, Zhu Q. Estrogen Deficiency Exacerbates Intervertebral Disc Degeneration Induced by Spinal Instability in Rats. Spine. 2019 May 1;44(9):E510-9. 
  11. Lang Li, Xin Duan, Zhaoxin Fan, Long Chen, Fei Xing, Zhao Xu, Qiang Chen & Zhou Xiang. Mesenchymal Stem Cells in Combination with Hyaluronic Acid for Articular Cartilage Defects. 2018) 8:9900 | DOI:10.1038/s41598-018-27737-y.
  12. Khatab S, van Osch GJ, Kops N, et al. Mesenchymal stem cell secretome reduces pain and prevents cartilage damage in a murine osteoarthritis model. Eur Cell Mater. 2018 Nov 6;36:218-230. doi: 10.22203/ eCM.v036a16.
  13. Mancuso P, Raman S, Glynn A, et al. Mesenchymal Stem Cell Therapy for Osteoarthritis: The Critical Role of the Cell Secretome. Front Bioeng Biotechnol. 2019; 7: 9. Published online 2019 Jan 29. doi: 10.3389/fbioe.2019.00009
  14. Neu CP. Functional imaging in OA: role of imaging in the evaluation of tissue biomechanics. Osteoarthritis and Cartilage 2014;2:1349-1359
  15. Themistocleous GS, Chloros GD, Kyrantzoulis IM, et al. Effectiveness of a single intra-articular bone marrow aspirate concentrate (BMAC) injection in patients with grade 3 and 4 knee osteoarthritis. Heliyon. 2018 Oct; 4(10): e00871. doi: 10.1016/j. heliyon.2018.e00871
  16. ANOVA Erlaubnis nach § 20b und c AMG für Sekretom und § 13 AMG für BMC, Regierungspräsidium Darmstadt, Hessen, 2018.

  1. Georg Hansmann, Philippe Chouvarine, Franziska Diekmann, Martin Giera, Markus Ralser, Michael Mülleder, Constantin von Kaisenberg, Harald Bertram, Ekaterina Legchenko & Ralf Hass "Human umbilical cord mesenchymal stem cell-derived treatment of severe pulmonary arterial hypertension". Nature Cardiovascular Research volume 1, pages568–576 (2022).
  2. Murphy JM, Fink DJ, Hunziker EB, et al. Stem cell therapy in a caprine model of osteoarthritis . Arthritis Rheum. 2003;48:3464–74.
  3. Lee KB, Hui JH, Song IC, Ardany L, et al. Injectable mesenchymal stem cell therapy for large cartilage defects—a porcine model. Stem Cell. 2007;25:2964–71.
  4. Saw KY, Hussin P, Loke SC, et al. Articular cartilage regeneration with autologous marrow aspirate and hyaluronic acid: an experimental study in a goat model. Arthroscopy . 2009;25(12):1391–400.
  5. Black L, Gaynor J, Adams C, et al. Effect of intra-articular injection of autologous adipose-derived mesenchymal stem and regenerative cells on clinical signs of chronic osteoarthritis of the elbow joint in dogs. Vet Ther. 2008;9:192-200.
  6. Centeno C, Busse D, Kisiday J, et al. Increased knee cartilage volume in degenerative joint disease using percutaneously implanted, autologous mesenchymal stem cells. Pain Physician. 2008;11(3):343–53.
  7. Centeno C, Kisiday J, Freeman M, et al. Partial regeneration of the human hip via autologous bone marrow nucleated cell transfer: a case study. Pain Physician. 2006;9:253–6.
  8. Centeno C, Schultz J, Cheever M. Safety and complications reporting on the re-implantation of culture-expanded mesenchymal stem cells using autologous platelet lysate technique. Curr Stem Cell. 2011;5(1):81–93.
  9. Pak J. Regeneration of human bones in hip osteonecrosis and human cartilage in knee osteoarthritis with autologous adipose derived stem cells: a case series. J Med Case Rep. 2001;5:296.
  10. Kuroda R, Ishida K, et al. Treatment of a full-thickness articular cartilage defect in the femoral condyle of an athlete with autologous bone-marrow stromal cells. Osteoarthritis Cartilage. 2007;15:226–31.
  11. Emadedin M, Aghdami N, Taghiyar L, et al. Intra-articular injection of autologous mesenchymal stem cells in six patients with knee osteoarthritis. Arch Iran Med. 2012;15(7):422–8.
  12. Saw KY et al. Articular cartilage regeneration with autologous peripheral blood stem cells versus hyaluronic acid: a randomized controlled trial. Arthroscopy. 2013;29(4):684–94.
  13. Vangsness CT, Farr J, Boyd J, et al. Adult human mesenchymal stem cells delivered via intra-articular injection to the knee following partial medial meniscectomy. J Bone Joint Surg. 2014;96(2):90–8.
  14. Freitag, Julien, et al. Mesenchymal stem cell therapy in the treatment of osteoarthritis: reparative pathways, safety and efficacy–a review. BMC musculoskeletal disorders 17.1 (2016): 230.
  15. Maumus, Marie, Christian Jorgensen, and Danièle Noël. " Mesenchymal stem cells in regenerative medicine applied to rheumatic diseases: role of secretome and exosomes. " Biochimie 95.12 (2013): 2229-2234.
  16. Dostert, Gabriel, et al. " How do mesenchymal stem cells influence or are influenced by microenvironment through extracellular vesicles communication?. " Frontiers in Cell and Developmental Biology 5 (2017).
  17. Chaparro, Orlando, and Itali Linero. " Regenerative Medicine: A New Paradigm in Bone Regeneration. " (2016).
  18. Toh, Wei Seong, et al. " MSC exosome as a cell-free MSC therapy for cartilage regeneration: Implications for osteoarthritis treatment. " Seminars in Cell & Developmental Biology. Academic Press, 2016.
  19. Chaparro, Orlando, and Itali Linero. " Regenerative Medicine: A New Paradigm in Bone Regeneration. " (2016).
  20. S. Koelling, J. Kruegel, M. Irmer, J.R. Path, B. Sadowski, X. Miro, et al., Migratory chondrogenic progenitor cells from repair tissue during the later stages of human osteoarthritis , Cell Stem Cell 4 (2009) 324–335.
  21. B.A. Jones, M. Pei, Synovium-Derived stem cells: a tissue-Specific stem cell for cartilage engineering and regeneration , Tissue Eng. B: Rev. 18 (2012) 301–311.
  22. W. Ando, J.J. Kutcher, R. Krawetz, A. Sen, N. Nakamura, C.B. Frank, et al., Clonal analysis of synovial fluid stem cells to characterize and identify stable mesenchymal stromal cell/mesenchymal progenitor cell phenotypes in a porcine model: a cell source with enhanced commitment to the chondrogenic lineage, Cytotherapy 16 (2014) 776–788.
  23. K.B.L. Lee, J.H.P. Hui, I.C. Song, L. Ardany, E.H. Lee, Injectable mesenchymal stem cell therapy for large cartilage defects—a porcine model, Stem Cells 25 (2007) 2964–2971.
  24. W.-L. Fu, C.-Y. Zhou, J.-K. Yu, A new source of mesenchymal stem cells for articular cartilage repair: mSCs derived from mobilized peripheral blood share similar biological characteristics in vitro and chondrogenesis in vivo as MSCs from bone marrow in a rabbit model , Am. J. Sports Med. 42 (2014) 592–601.
  25. X. Xie, Y. Wang, C. Zhao, S. Guo, S. Liu, W. Jia, et al., Comparative evaluation of MSCs from bone marrow and adipose tissue seeded in PRP-derived scaffold for cartilage regeneration , Biomaterials 33 (2012) 7008–7018.
  26. E.-R. Chiang, H.-L. Ma, J.-P. Wang, C.-L. Liu, T.-H. Chen, S.-C. Hung, Allogeneic mesenchymal stem cells in combination with hyaluronic acid for the treatment of osteoarthritis in rabbits , PLoS One 11 (2016) e0149835.
  27. H. Nejadnik, J.H. Hui, E.P. Feng Choong, B.-C. Tai, E.H. Lee, Autologous bone marrow–derived mesenchymal stem cells versus autologous chondrocyte implantation: an observational cohort study , Am. J. Sports Med. 38 (2010) 1110–1116.
  28. I. Sekiya, T. Muneta, M. Horie, H. Koga, Arthroscopic transplantation of synovial stem cells improves clinical outcomes in knees with cartilage defects , Clin. Orthop. Rel. Res. 473 (2015) 2316–2326.
  29. Y.S. Kim, Y.J. Choi, Y.G. Koh, Mesenchymal stem cell implantation in knee osteoarthritis: an assessment of the factors influencing clinical outcomes , Am. J. Sports Med. 43 (2015) 2293–2301.
  30. W.-L. Fu, Y.-F. Ao, X.-Y. Ke, Z.-Z. Zheng, X. Gong, D. Jiang, et al., Repair of large full-thickness cartilage defect by activating endogenous peripheral blood stem cells and autologous periosteum flap transplantation combined with patellofemoral realignment , Knee 21 (2014) 609–612.
  31. Y.-G. Koh, O.-R. Kwon, Y.-S. Kim, Y.-J. Choi, D.-H. Tak, Adipose-derived mesenchymal stem cells with microfracture versus microfracture alone: 2-year follow-up of a prospective randomized trial , Arthrosc. J. Arthrosc. Relat. Surg. 32 (2016) 97–109.
  32. T.S. de Windt, L.A. Vonk, I.C.M. Slaper-Cortenbach, M.P.H. van den Broek, R. Nizak, M.H.P. van Rijen, et al., Allogeneic mesenchymal stem cells stimulate cartilage regeneration and are safe for single-Stage cartilage repair in humans upon mixture with recycled autologous chondrons , Stem Cells (2016) (n/a-n/a).
  33. L. da Silva Meirelles, A.M. Fontes, D.T. Covas, A.I. Caplan, Mechanisms involved in the therapeutic properties of mesenchymal stem cells , Cytokine Growth Factor Rev. 20 (2009) 419–427.
  34. W.S. Toh, C.B. Foldager, M. Pei, J.H.P. Hui, Advances in mesenchymal stem cell-based strategies for cartilage repair and regeneration , Stem Cell Rev. Rep. 10 (2014) 686–696.
  35. R.C. Lai, F. Arslan, M.M. Lee, N.S.K. Sze, A. Choo, T.S. Chen, et al., Exosome secreted by MSC reduces myocardial ischemia/reperfusion injury , Stem Cell Res. 4 (2010) 214–222.
  36. S. Zhang, W.C. Chu, R.C. Lai, S.K. Lim, J.H.P. Hui, W.S. Toh, Exosomes derived from human embryonic mesenchymal stem cells promote osteochondral regeneration, Osteoarthr . Cartil. 24 (2016) 2135–2140.
  37. S. Zhang, W. Chu, R. Lai, J. Hui, E. Lee, S. Lim, et al., 21 – human mesenchymal stem cell-derived exosomes promote orderly cartilage regeneration in an immunocompetent rat osteochondral defect model , Cytotherapy 18 (2016) S13.
  38. C.T. Lim, X. Ren, M.H. Afizah, S. Tarigan-Panjaitan, Z. Yang, Y. Wu, et al., Repair of osteochondral defects with rehydrated freeze-dried oligo[poly(ethylene glycol) fumarate] hydrogels seeded with bone marrow mesenchymal stem cells in a porcine model
  39. A. Gobbi, G. Karnatzikos, S.R. Sankineani, One-step surgery with multipotent stem cells for the treatment of large full-thickness chondral defects of the knee , Am. J. Sports Med. 42 (2014) 648–657.
  40. A. Gobbi, C. Scotti, G. Karnatzikos, A. Mudhigere, M. Castro, G.M. Peretti, One-step surgery with multipotent stem cells and Hyaluronan-based scaffold for the treatment of full-thickness chondral defects of the knee in patients older than 45 years , Knee Surg. Sports Traumatol. Arthrosc. (2016) 1–8.
  41. A. Gobbi, G. Karnatzikos, C. Scotti, V. Mahajan, L. Mazzucco, B. Grigolo, One-step cartilage repair with bone marrow aspirate concentrated cells and collagen matrix in full-thickness knee cartilage lesions: results at 2-Year follow-up , Cartilage 2 (2011) 286–299.
  42. K.L. Wong, K.B.L. Lee, B.C. Tai, P. Law, E.H. Lee, J.H.P. Hui, Injectable cultured bone marrow-derived mesenchymal stem cells in varus knees with cartilage defects undergoing high tibial osteotomy: a prospective, randomized controlled clinical trial with 2 years’ follow-up , Arthrosc. J. Arthrosc. Relat. Surg. 29 (2013) 2020–2028.
  43. J.M. Hare, J.E. Fishman, G. Gerstenblith, et al., Comparison of allogeneic vs autologous bone marrow–derived mesenchymal stem cells delivered by transendocardial injection in patients with ischemic cardiomyopathy: the poseidon randomized trial, JAMA 308 (2012) 2369–2379.
  44. L. Wu, J.C.H. Leijten, N. Georgi, J.N. Post, C.A. van Blitterswijk, M. Karperien, Trophic effects of mesenchymal stem cells increase chondrocyte proliferation and matrix formation , Tissue Eng. A 17 (2011) 1425–1436.
  45. L. Wu, H.-J. Prins, M.N. Helder, C.A. van Blitterswijk, M. Karperien, Trophic effects of mesenchymal stem cells in chondrocyte Co-Cultures are independent of culture conditions and cell sources , Tissue Eng. A 18 (2012) 1542–1551.
  46. S.K. Sze, D.P.V. de Kleijn, R.C. Lai, E. Khia Way Tan, H. Zhao, K.S. Yeo, et al., Elucidating the secretion proteome of human embryonic stem cell-derived mesenchymal stem cells , Mol. Cell. Proteomics 6 (2007) 1680–1689.
  47. M.B. Murphy, K. Moncivais, A.I. Caplan, Mesenchymal stem cells: environmentally responsive therapeutics for regenerative medicine , Exp. Mol. Med. 45 (2013) e54.
  48. M.J. Lee, J. Kim, M.Y. Kim, Y.-S. Bae, S.H. Ryu, T.G. Lee, et al., Proteomic analysis of tumor necrosis factor--induced secretome of human adipose tissue-derived mesenchymal stem cells , J. Proteome Res. 9 (2010) 1754–1762.
  49. S. Bruno, C. Grange, M.C. Deregibus, R.A. Calogero, S. Saviozzi, F. Collino, et al., Mesenchymal stem cell-derived microvesicles protect against acute tubular injury, J. Am. Soc. Nephrol. 20 (2009) 1053–1067.
  50. M. Yá˜nez-Mó, P.R.-M. Siljander, Z. Andreu, A.B. Zavec, F.E. Borràs, E.I. Buzas, et al. Biological properties of extracellular vesicles and their physiological functions (2015).
  51. C. Lawson, J.M. Vicencio, D.M. Yellon, S.M. Davidson, Microvesicles and exosomes: new players in metabolic and cardiovascular disease , J. Endocrinol. 228 (2016) R57–R71.
  52. A.G. Thompson, E. Gray, S.M. Heman-Ackah, I. Mager, K. Talbot, S.E. Andaloussi, et al., Extracellular vesicles in neurodegenerative diseas—pathogenesis to biomarkers, Nat. Rev. Neurol. 12 (2016) 346–357.
  53. I.E.M. Bank, L. Timmers, C.M. Gijsberts, Y.-N. Zhang, A. Mosterd, J.-W. Wang, et al., The diagnostic and prognostic potential of plasma extracellular vesicles for cardiovascular disease , Expert Rev. Mol. Diagn. 15 (2015) 1577–1588.
  54. T. Kato, S. Miyaki, H. Ishitobi, Y. Nakamura, T. Nakasa, M.K. Lotz, et al., Exosomes from IL-1 stimulated synovial fibroblasts induce osteoarthritic changes in articular chondrocytes , Arthritis. Res. Ther. 16 (2014) 1–11.
  55. R.W.Y. Yeo, S.K. Lim, Exosomes and their therapeutic applications, in: C. Gunther, A. Hauser, R. Huss (Eds.), Advances in Pharmaceutical Cell TherapyPrinciples of Cell-Based Biopharmaceuticals, World Scientific, Singapore, 2015, pp. 477–491.
  56. X. Qi, J. Zhang, H. Yuan, Z. Xu, Q. Li, X. Niu, et al., Exosomes secreted by human-Induced pluripotent stem cell-derived mesenchymal stem cells repair critical-sized bone defects through enhanced angiogenesis and osteogenesis in osteoporotic rats , Int. J. Biol. Sci. 12 (2016) 836–849.
  57. R.C. Lai, F. Arslan, S.S. Tan, B. Tan, A. Choo, M.M. Lee, et al., Derivation and characterization of human fetal MSCs: an alternative cell source for large-scale production of cardioprotective microparticles , J. Mol. Cell. Cardiol. 48 (2010) 1215–1224.
  58. Y. Zhou, H. Xu, W. Xu, B. Wang, H. Wu, Y. Tao, et al., Exosomes released by human umbilical cord mesenchymal stem cells protect against cisplatin-induced renal oxidative stress and apoptosis in vivo and in vitro , Stem Cell Res. Ther. 4 (2013) 1–13.
  59. Y. Qin, L. Wang, Z. Gao, G. Chen, C. Zhang, Bone marrow stromal/stem cell-derived extracellular vesicles regulate osteoblast activity and differentiation in vitro and promote bone regeneration in vivo , Sci. Rep. 6 (2016) 21961.
  60. M. Nakano, K. Nagaishi, N. Konari, Y. Saito, T. Chikenji, Y. Mizue, et al., Bone marrow-derived mesenchymal stem cells improve diabetes-induced cognitive impairment by exosome transfer into damaged neurons and astrocytes , Sci. Rep. 6 (2016) 24805.
  61. K. Nagaishi, Y. Mizue, T. Chikenji, M. Otani, M. Nakano, N. Konari, et al., Mesenchymal stem cell therapy ameliorates diabetic nephropathy via the paracrine effect of renal trophic factors including exosomes , Sci. Rep. 6 (2016) 34842.
  62. S.R. Baglio, K. Rooijers, D. Koppers-Lalic, F.J. Verweij, M. Pérez Lanzón, N. Zini, et al., Human bone marrow- and adipose-mesenchymal stem cells secrete exosomes enriched in distinctive miRNA and tRNA species , Stem Cell Res. Ther. 6 (2015) 1–20.
  63. T. Chen, R. Yeo, F. Arslan, Y. Yin, S. Tan, Efficiency of exosome production correlates inversely with the developmental maturity of MSC donor, J. Stem Cell Res. Ther. 3 (2013) 2.
  64. R.C. Lai, S.S. Tan, B.J. Teh, S.K. Sze, F. Arslan, D.P. de Kleijn, et al., Proteolytic potential of the MSC exosome proteome: implications for an exosome-mediated delivery of therapeutic proteasome , Int. J. Proteomics 2012 (2012) 971907.
  65. T.S. Chen, R.C. Lai, M.M. Lee, A.B.H. Choo, C.N. Lee, S.K. Lim, Mesenchymal stem cell secretes microparticles enriched in pre-microRNAs , Nucleic Acids Res. 38 (2010) 215–224.
  66. R.W. Yeo, R.C. Lai, K.H. Tan, S.K. Lim, Exosome: a novel and safer therapeutic refinement of mesenchymal stem cell, J. Circ. Biomark. 1 (2013) 7.
  67. R.C. Lai, R.W. Yeo, S.K. Lim, Mesenchymal stem cell exosomes, Semin. Cell Dev. Biol. 40 (2015) 82–88.
  68. B. Zhang, R.W. Yeo, K.H. Tan, S.K. Lim, Focus on extracellular vesicles: therapeutic potential of stem cell-derived extracellular vesicles , Int. J. Mol. Sci. 17 (2016) 174.
  69. Hu G-w, Q. Li, X. Niu, B. Hu, J. Liu, Zhou S-m, et al., Exosomes secreted by human-induced pluripotent stem cell-derived mesenchymal stem cells attenuate limb ischemia by promoting angiogenesis in mice , Stem Cell Res. Ther. 6 (2015) 1–15.
  70. J. Zhang, J. Guan, X. Niu, G. Hu, S. Guo, Q. Li, et al., Exosomes released from human induced pluripotent stem cells-derived MSCs facilitate cutaneous wound healing by promoting collagen synthesis and angiogenesis , J. Transl. Med. 13 (2015) 1–14.
  71. B. Zhang, M. Wang, A. Gong, X. Zhang, X. Wu, Y. Zhu, et al., HucMSC-exosome mediated-Wnt4 signaling is required for cutaneous wound healing, Stem Cells 33 (2015) 2158–2168.
  72. B. Zhang, Y. Yin, R.C. Lai, S.S. Tan, A.B.H. Choo, S.K. Lim, Mesenchymal stem cells secrete immunologically active exosomes , Stem Cells Dev. 23 (2013) 1233–1244.
  73. C.Y. Tan, R.C. Lai, W. Wong, Y.Y. Dan, S.-K. Lim, H.K. Ho, Mesenchymal stem cell-derived exosomes promote hepatic regeneration in drug-induced liver injury models , Stem Cell Res. Ther. 5 (2014) 1–14.
  74. C. Lee, S.A. Mitsialis, M. Aslam, S.H. Vitali, E. Vergadi, G. Konstantinou, et al., Exosomes mediate the cytoprotective action of mesenchymal stromal cells on hypoxia-induced pulmonary hypertension , Circulation 126 (2012) 2601–2611.
  75. B. Yu, H. Shao, C. Su, Y. Jiang, X. Chen, L. Bai, et al., Exosomes derived from MSCs ameliorate retinal laser injury partially by inhibition of MCP-1 , Sci. Rep. 6 (2016) 34562.
  76. Jo CH, Lee YG, Shin WH, et al. Intra-articular injection of mesenchymal stem cells for the treatment of osteoarthritis of the knee: a proof of concept clinical trial. Stem Cells. 2014;32(5):1254–66.
  77. Vega, Aurelio, et al. Treatment of knee osteoarthritis with allogeneic bone marrow mesenchymal stem cells: a randomized controlled trial. Transplantation. 2015;99(8):1681–90.
  78. Davatchi F, Sadeghi-Abdollahi B, Mohyeddin M, et al. Mesenchymal stem cell therapy for knee osteoarthritis. Preliminary report of four patients. Int J Rheum Dis. 2011;14(2):211–5
  79. Hernigou P, Flouzat Lachaniette CH, Delambre J, et al. Biologic augmentation of rotator cuff repair with mesenchymal stem cells during arthroscopy improves healing and prevents further tears: a case- controlled study. Int Orthop. 2014;38(9):1811–1818
  80. Galli D, Vitale M, Vaccarezza M. Bone marrow-derived mesenchymal cell differentiation toward myogenic lineages: facts and perspectives. Biomed Res Int. 2014;2014:6.
  81. Beitzel K, Solovyova O, Cote MP, et al. The future role of mesenchymal Stem cells in The management of shoulder disorders . Arthroscopy. 2013;29(10):1702–1711.
  82. Isaac C, Gharaibeh B, Witt M, Wright VJ, Huard J. Biologic approaches to enhance rotator cuff healing after injury. J Shoulder Elbow Surg. 2012;21(2):181–190.
  83. Malda, Jos, et al. " Extracellular vesicles [mdash] new tool for joint repair and regeneration. " Nature Reviews Rheumatology (2016).

  1. Xu, Ming, et al. " Transplanted senescent cells induce an osteoarthritis-like condition in mice. " The Journals of Gerontology Series A: Biological Sciences and Medical Sciences (2016): glw154.
  2. McCulloch, Kendal, Gary J. Litherland, and Taranjit Singh Rai. " Cellular senescence in osteoarthritis pathology ." Aging Cell (2017).

Patienten-Services des ANOVA Institute for Regenerative Medicine

  • Das Institut liegt in Offenbach am Main, im Herzen Deutschlands, weniger als 20 Minuten vom Frankfurter Flughafen entfernt
  • Individualisierte Therapie mit innovativen Stammzellprodukten
  • Individuell geplante diagnostische Untersuchungen mit modernen MR- und CT-Geräten und Blutuntersuchungen
  • Deutscher Qualitätsstandard (100% made in Germany) für Produktsicherheit und Qualitätssicherung
  • Persönlicher Service mit freundlichen, engagierten Patientenbetreuern und Krankenschwestern
  • Stetiger wissenschaftlicher Austausch mit akademischen Einrichtungen, um Ihnen die innovativsten Behandlungen im Bereich regenerative Medizin anbieten zu können